Información

¿Qué están haciendo estas dos moscas de la fruta?

¿Qué están haciendo estas dos moscas de la fruta?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Al tomar algunas fotos capturé accidentalmente dos moscas de la fruta haciendo esto:

Desafortunadamente, las fotos están borrosas, pero por lo que puedo decir, una mosca se acerca a la otra por detrás, y luego algo se retrae / tira hacia el cuerpo de la mosca delantera. Supongo que tiene que ver con la reproducción, pero no se parece al apareamiento de la mosca de la fruta que he visto antes.

Aquí hay algunas imágenes fijas de la secuencia:


He estado trabajando con moscas de la fruta durante 7-8 años, incluidos muchos ensayos grandes de apareamiento y cortejo. Creo que lo que estás viendo es el macho (identificable por el extremo negro del abdomen y la forma diferente) acercándose a una hembra. A juzgar por la extensión del ala derecha del hombre en la segunda imagen fija, está haciendo un breve intento de cortejo, pero es muy difícil estar seguro de eso a partir de estas imágenes. Luego, la hembra extiende su ovipositor.

Creo que esto podría ser una de dos cosas:

  1. Un comportamiento de rechazo de pareja por parte de las hembras: ella hizo activamente el movimiento para detener los avances de los machos.
  2. La hembra simplemente se estaba preparando para la oviposición, el macho simplemente se acercó a ella.

Lo he visto suceder suficientes veces tanto con mujeres sujetas a cortejo como con mujeres no sujetas a cortejo para pensar que cualquiera de esos es plausible para lo que está sucediendo en su clip. Dado el posible cortejo por parte del macho y el siguiente texto y videos de un artículo reciente, diría que es la opción 1, un rechazo de pareja.

"Las hembras recién apareadas rechazan cortejar a los machos a través de una variedad de acciones, como descampar, agitar las alas, patear al macho que se acerca o la extrusión del ovipositor [8]. Por lo tanto, la cópula cambia el comportamiento de la hembra de aceptación a rechazo". - Kimura y col. 2015

y

"En condiciones naturales, el La hembra recién apareada ocasionalmente extiende el ovipositor recto a lo largo del eje de su cuerpo. (eje anteroposterior) hacia el macho cortejo (Fig. 1A, Película S1), que generalmente se coloca detrás de la hembra [21]. Durante la extensión del ovipositor, el abdomen femenino se comprimió a lo ancho en toda su longitud. Nos referimos a la extensión del ovipositor como extrusión de tipo apareamiento. cuando sobresalía horizontalmente a lo largo del eje del cuerpo femenino. Una hembra apareada que ha encontrado un sitio adecuado para la oviposición bajará y doblará su abdomen hacia abajo. e inserte el ovipositor en el sustrato antes de realizar movimientos para expulsar un huevo que se inserta en el sustrato (Fig. 1B, Película S2) [9]. A diferencia de la extrusión por rechazo, la hembra estrechó el abdomen solo en su parte posterior." - Kimura y col. 2015

En las figuras S1 y S2 puedes ver esos dos comportamientos muy claramente en videos.

Tenga en cuenta que llegué a mi respuesta antes de encontrar este artículo de Kimura, por lo que son dos líneas de evidencia independiente (mi experiencia y su artículo). Espero que responda a tu pregunta.


Moscas de la fruta contra mosquitos

Mosca de la fruta

La diferencia entre mosquitos hongos y moscas de la fruta

Tanto las moscas de la fruta como los mosquitos de los hongos son insectos molestos comunes. De hecho, causan tantos de los mismos problemas que los propietarios los identifican erróneamente fácilmente. Aunque las plagas voladoras tienen hábitos similares y se ven algo similares, las moscas de la fruta y los jejenes son bastante diferentes.

Apariencia de mosca de la fruta contra mosquito

Mosquito

Estas pequeñas plagas miden alrededor de un octavo de pulgada de largo, lo que dificulta que los residentes detecten algunas diferencias en la apariencia de las moscas de la fruta y los jejenes. Sin embargo, algunas características las hacen más fáciles de distinguir:

  • Color: Las moscas de la fruta oscilan entre el bronceado y el negro. Los mosquitos de los hongos son de color gris oscuro o negro.
  • Forma: Pensar en las moscas de la fruta o los jejenes en comparación con otras plagas puede ayudar a identificarlos. Las moscas de la fruta tienen una silueta redondeada como una versión más pequeña de la mosca doméstica común. Por otro lado, los mosquitos de los hongos tienen patas colgantes y cuerpos largos que los hacen parecer similares a un pequeño mosquito.
  • Ojos: Las moscas de la fruta son fáciles de reconocer por sus grandes ojos rojos, pero los ojos del mosquito del hongo son tan pequeños que son difíciles de ver.

Mosca de la fruta contra el hábitat del mosquito

Otra diferencia entre las infestaciones de moscas de la fruta y mosquitos es dónde se acumulan las plagas. Los mosquitos de los hongos anidan en el suelo de los jardines o en las plantas en macetas de interior para alimentarse de materia orgánica. Los adultos de la mosca de la fruta comen frutas demasiado maduras o comida podrida en los botes de basura y las larvas de la mosca de la fruta se alimentan del limo que se encuentra en los desagües sucios.

Control de moscas de la fruta contra mosquitos

Estas dos plagas se reproducen rápidamente, por lo que la eliminación rápida es una prioridad. Además de molestar a los propietarios por su gran número, los mosquitos de los hongos también dañan las raíces de las plantas, mientras que las moscas de la fruta pueden propagar enfermedades a través de los alimentos contaminados.

Debido a que cada insecto presenta sus propios problemas, el control de estas plagas requiere diferentes métodos. Los residentes que luchan con problemas con la mosca de la fruta o los mosquitos pueden acudir a los expertos de Orkin para obtener ayuda.


¿De dónde vienen las moscas de la fruta?

Puede parecer como si las moscas de la fruta vinieran de la nada para infestar un hogar. Esta percepción se debe a la rápida reproducción, desarrollo y amor de las plagas por los alimentos humanos.

Las moscas de la fruta suelen poner sus huevos directamente sobre frutas y verduras en descomposición o dentro de los desagües que no se mantienen limpios. Las plagas pueden producir hasta 500 crías durante cualquier temporada de apareamiento, y solo toma alrededor de una semana para que concluya todo el ciclo de vida. Como tal, las poblaciones de moscas de la fruta se salen de control rápidamente.

¿De dónde vienen las moscas de la fruta en la casa?

Las infestaciones tienen que empezar en alguna parte. Las moscas de la fruta se mueven hacia las cocinas, los baños y los sótanos si detectan una fuente de alimento. Les atrae la fruta demasiado madura en el mostrador o cualquier materia fermentada en los desagües, trapeadores y cubos de basura. Los propietarios desprevenidos también pueden llevar estas plagas al interior de los cultivos de jardín.

¿Cuándo son un problema?

El olor a fruta madura y productos en descomposición atrae a estos insectos. Si bien las moscas de la fruta se convierten en un problema de plagas durante todo el año, generalmente es más probable que sean una plaga interna durante el verano y el otoño si la comida es abundante. Sin embargo, también pueden ser un problema durante todo el año.

Prevención y eliminación de moscas de la fruta

Determinar de dónde provienen las moscas de la fruta ayuda a controlar una infestación en interiores. Para hacer que los hogares sean menos acogedores para las plagas, elimine las fuentes de alimento de la mosca de la fruta. Deseche rápidamente los productos viejos en descomposición, limpie los desagües con regularidad y limpie los derrames de bebidas.

Dado que las moscas de la fruta propagan bacterias que causan enfermedades, los problemas con estos insectos son graves. En lugar de intentar el control de bricolaje, los residentes deben comunicarse con los profesionales. El personal experto de Orkin comprende el manejo de la mosca de la fruta.


¿La evolución conduce a predicciones precisas? Moscas de la fruta

La prueba de fuego de una teoría científica es si puede o no hacer predicciones comprobables sobre cosas que no se conocen. Si no puede, no es realmente una teoría científica. Si es posible, esas predicciones deben probarse mediante observación o experimentación. Si los resultados de la prueba confirman las predicciones, puede tener más fe en la teoría. Si no lo hacen, debe modificar su teoría o abandonarla. Una de las principales razones por las que soy creacionista es que el creacionismo ha hecho muchas predicciones comprobables, y muchas de esas predicciones han sido confirmadas. De hecho, el creacionismo tiene un historial mucho mejor cuando se trata de predicciones confirmadas que la evolución (ver aquí y aquí).

Recientemente, me encontré con otro estudio que demuestra otra predicción fallida de la teoría de la evolución. Estudió la proteína alcohol deshidrogenasa (ADH) producida por las moscas de la fruta. Las moscas de la fruta a menudo consumen alcohol porque se alimentan de materiales en descomposición, y la ADH que producen les permite hacerlo. ¿Cómo producen ADH? Tienen un gen que le da las instrucciones necesarias a la célula. Ese gen es, en efecto, una "receta" para la ADH.

Los estudios ya han demostrado que la mosca común de la fruta (Drosophila melanogaster) tiende a alimentarse de cosas ricas en alcohol (como fruta podrida) más que una mosca de la fruta similar, Drosophila simulans. La explicación evolutiva que siempre se ha dado para este hecho es que estas dos moscas de la fruta tenían un antepasado común, y ese antepasado tenía un gen que producía ADH menos eficiente. Como resultado, el antepasado común no comía cosas ricas en alcohol.

La línea evolutiva que condujo a la mosca de la fruta común experimentó mutaciones en el gen ADH, y esas mutaciones terminaron haciendo que la ADH fuera más eficiente. La selección natural hizo que esas moscas de la fruta sobrevivieran, porque ahora podían sobrevivir comiendo mucha fruta podrida, mientras que las otras moscas solo podían comer un poco de fruta podrida. Ese proceso continuó con el tiempo, y eventualmente condujo a la mosca común de la fruta que vemos hoy, que come mucha fruta podrida. En la jerga de la biología evolutiva, diríamos que la mosca común de la fruta se sometió a una "selección positiva" en su gen ADH, mientras que la otra mosca de la fruta no.

Si bien esta explicación tiene mucho sentido, cuatro biólogos decidieron probar si es correcta o no. Primero, observaron las diferencias en el gen ADH entre las dos especies de moscas de la fruta y encontraron lo que pensaron que sería el gen "ancestral", el que estaba en el ancestro común más reciente de las dos moscas de la fruta. Luego compararon la capacidad de digerir el alcohol de la ADH elaborada a partir de ese gen "ancestral" y la ADH elaborada a partir del gen de la mosca común de la fruta. La predicción evolutiva sería que la ADH ancestral sería menos eficiente para digerir el alcohol que la ADH de la mosca común de la fruta. En un entorno de laboratorio (los biólogos lo llaman in vitro), no hubo diferencia en la capacidad de digerir el alcohol de la ADH producida por los dos genes diferentes.

Por supuesto, un organismo no es un laboratorio, por lo que decidieron probar el gen ancestral en moscas de la fruta reales (los biólogos lo llaman en vivo). Editaron el ADN de la mosca de la fruta común para que su gen ADH fuera el "ancestral", y luego midieron la eficiencia con la que esas moscas de la fruta digieren el alcohol. Una vez más, la predicción evolutiva sería que las moscas comunes de la fruta con este ADN editado serían menos eficientes para digerir el alcohol que las moscas comunes de la fruta cuyo ADN no había sido editado. Una vez más, sin embargo, esa predicción fue falsificada. Ambos digerieron alcohol con la misma eficacia.

Bueno, la eficiencia de la digestión puede no ser la clave para la supervivencia, por lo que los biólogos en realidad hicieron pruebas para medir qué tan bien sobrevivían las moscas de la fruta con el ADN editado en presencia de mucho alcohol. La predicción evolutiva sería que no deberían sobrevivir tan bien como las moscas de la fruta comunes con ADN sin editar. Una vez más, eso fue falsificado. ¡No hubo diferencia detectable entre la capacidad de supervivencia de las dos moscas de la fruta diferentes! Por tanto, los autores concluyen que la explicación evolutiva de la diferencia entre los genes ADH en Drosophila melanogaster y Drosophila simulans Está Mal.

Además de falsificar una predicción evolutiva que se ha declarado como un hecho a muchos estudiantes desprevenidos, los autores tienen algunas palabras de sabiduría para los biólogos evolutivos:

Probamos una hipótesis ampliamente aceptada de adaptación molecular: que los cambios en la proteína alcohol deshidrogenasa (ADH) a lo largo del linaje que conduce a Drosophila melanogaster aumentaron la actividad catalítica de la enzima y, por lo tanto, contribuyeron a la tolerancia al etanol y la adaptación de la especie a su etanol. Rico nicho ecológico. Nuestros experimentos refutan enérgicamente las predicciones de la hipótesis de la ADH adaptativa y advierten contra la aceptación de relatos intuitivamente atractivos de la adaptación molecular histórica que se basan en pruebas correlativas.

Muchos biólogos aceptan las predicciones evolutivas como un hecho simplemente porque "tienen sentido" (son intuitivamente atractivas). Como advierten estos biólogos, esa no debería ser la práctica de ningún científico serio. Les digo a mis alumnos todo el tiempo que la ciencia no tiene por qué tener sentido. Simplemente tiene que ser confirmado por los datos. Este es solo uno de los muchos, muchos ejemplos de cómo los datos no confirman las explicaciones evolutivas.


Ciclo de vida de la mosca de la fruta

¿Alguna vez has notado las diminutas moscas de la fruta revoloteando alrededor de tu frutero en verano? ¿Sabías que se han utilizado para la investigación genética durante casi cien años? Genética es el estudio de cómo se transmiten los rasgos de una generación a la siguiente. Los tipos de seres vivos que funcionan mejor para los estudios genéticos son aquellos que son fáciles de mantener en un laboratorio, tienen muchos descendientes y, lo más importante, tienen generaciones cortas. A Generacion es el tiempo medio entre el nacimiento de los padres y el nacimiento de los padres y la descendencia. Una generación humana tiene veinticinco años o más. Una generación de moscas de la fruta dura dos semanas.

Las moscas de la fruta tienen otras características útiles para la investigación. Las moscas de la fruta tienen muchos rasgos de origen genético, como el color de ojos rojo, blanco y marrón, que son fáciles de identificar. También es útil para la investigación que es bastante fácil distinguir los sexos. Los machos de la mosca de la fruta son más pequeños y su abdomen es menos puntiagudo que el de las hembras y el rsquo abdómenes, con una mancha negra distintiva.

Parte de la información más importante descubierta sobre las moscas de la fruta se refiere a los cromosomas. Cromosomas contienen ADN en las células que da instrucciones sobre cómo funcionan y se desarrollan los organismos. Los humanos tenemos 23 pares de cromosomas. Las moscas de la fruta tienen sólo 4. Uno de los cuatro pares de cromosomas se llama cromosomas sexuales. La forma en que se emparejan los cromosomas sexuales determina si la mosca es macho o hembra. Los machos de la mosca de la fruta y los machos humanos tienen un cromosoma X e Y. Las hembras de la mosca de la fruta y las hembras humanas tienen dos cromosomas X. A principios de la década de 1900, el genetista de moscas de la fruta Thomas Hunt Morgan utilizó sus extensos datos sobre múltiples generaciones de moscas de la fruta para determinar cómo los cromosomas estaban relacionados con los genes en todos los organismos.

Problema

¿Cuál es el ciclo de vida de una mosca de la fruta?

Materiales

  • Plátano demasiado maduro
  • Tarro de un cuarto de galón
  • Banda de goma grande
  • Lupa o microscopio de disección
  • Cultivos de moscas de la fruta sin alas (opcional, se pueden comprar en una tienda de mascotas)

Procedimiento

  1. Pela el plátano y colócalo en un frasco sin tapar afuera.
  2. En un par de horas, deberías encontrar pequeñas moscas de la fruta arrastrándose alrededor del plátano. Necesita capturar varias moscas de la fruta para que este experimento funcione. Si no han llegado moscas de la fruta a su plátano, intente esperar un par de horas más, o si desea hacer su experimento en el invierno, puede pedir moscas de la fruta sin alas en una tienda de mascotas.
  3. Cubre el frasco con una toalla de papel.
  4. Asegure la toalla de papel con una goma elástica.
  5. Con la lupa, intente observar las moscas de la fruta y vea si puede identificar los machos y las hembras.
  6. Manteniendo la toalla de papel segura, observe las moscas de la fruta todos los días durante al menos diez días con la lupa.

Resultados

Al principio, es posible que observe pequeñas manchas blancas y húmedas en la superficie del plátano. Estos son los huevos que pusieron las moscas de la fruta. Después de un par de días, deberías notar pequeñas criaturas blancas parecidas a gusanos en la superficie del plátano. Dado que las moscas de la fruta siguen siendo moscas, estos lindos gusanos blancos se llaman gusanos.

Estos gusanos se mantienen ocupados comiendo túneles a través del plátano todo el día y la noche. Cuatro o cinco días después, los gusanos se adhieren a la pared interior del frasco, formando estructuras que parecen grandes granos de arroz, que se oscurecen después de un par de días. Aproximadamente diez días después, pequeñas moscas deberían emerger del plátano. Si el plátano en descomposición no da asco a tu familia, puedes observar cómo esta generación de moscas se aparea y pone huevos, repitiendo el ciclo de vida.

Las moscas de la fruta son insectos y, como todos los insectos, pasan por distintas etapas de vida. Las moscas de la fruta que capturó pusieron huevos, y esos gusanos blancos y ondulados que observó son la segunda etapa del desarrollo de la mosca de la fruta, llamada larvas, al igual que las orugas, son la etapa larvaria de las mariposas y las polillas. Esas pequeñas motas fueron la tercera etapa del ciclo de vida de la mosca de la fruta, llamada pupas. Las motas se oscurecieron a medida que se desarrollaban las patas, alas y cabezas de las moscas.

Ir más lejos

Repite el experimento poniendo frascos a diferentes temperaturas. ¿Cómo afecta esto al comportamiento de la mosca de la fruta? Investiga algunos experimentos genéticos realizados con moscas. Incluso puede pedir kits de moscas de la fruta en algunas tiendas de ciencia en línea.

Exención de responsabilidad y precauciones de seguridad

Education.com proporciona las Ideas de proyectos de la feria de ciencias solo con fines informativos. Education.com no ofrece ninguna garantía o representación con respecto a las Ideas del Proyecto de la Feria de Ciencias y no es responsable de ninguna pérdida o daño, directa o indirectamente, causado por el uso de dicha información. Al acceder a Science Fair Project Ideas, renuncia y renuncia a cualquier reclamo contra Education.com que surja del mismo. Además, su acceso al sitio web de Education.com y a Science Fair Project Ideas está cubierto por la Política de privacidad de Education.com y los Términos de uso del sitio, que incluyen limitaciones sobre la responsabilidad de Education.com.

Por la presente se advierte que no todas las Ideas de proyectos son apropiadas para todas las personas o en todas las circunstancias. La implementación de cualquier Idea de Proyecto Científico debe llevarse a cabo solo en entornos apropiados y con la supervisión apropiada de los padres o de otro tipo. Leer y seguir las precauciones de seguridad de todos los materiales utilizados en un proyecto es responsabilidad exclusiva de cada individuo. Para obtener más información, consulte el manual de seguridad científica de su estado.


¿Qué están haciendo estas dos moscas de la fruta? - biología

La mosca mexicana de la fruta Anastrepha ludens (Loew), es una plaga muy seria de diversas frutas, particularmente cítricos y mango, en México y Centroamérica. Su distribución natural incluye el Valle del Río Grande de Texas, donde las poblaciones alcanzan habitualmente el estado de plaga si no se practican las medidas de control. Es un invasor frecuente en el sur de California y Arizona. La mosca mexicana de la fruta representa una amenaza particular para Florida debido a su especial afinidad por la toronja, de la cual Florida es uno de los principales productores del mundo. Las larvas de la mosca de la fruta mexicana se transportan ampliamente en frutas infestadas.

Figura 1. Mosca de la fruta mexicana hembra adulta, Anastrepha ludens (Loew). Fotografía de Jeff Lotz, División de Industria Vegetal.

Sinonimia (Volver arriba)

Acrotoxa ludens Loew
Trypeta ludens (Loew 1973)
Anastrepha lathana Piedra 1942

Distribución (volver al principio)

La mosca de la fruta mexicana es autóctona de México y gran parte de América Central hasta el sur de Costa Rica. También se ha extendido a las secciones de cítricos cultivados de la costa oeste de México y hacia el norte hacia Texas, Arizona y California, lo que ha resultado en campañas continuas de detección, prospección y erradicación en estas áreas.En enero de 2012, el USDA-APHIS anunció que la mosca mexicana de la fruta fue erradicada del último condado de Texas en el que había estado presente. A menos que se haya introducido nuevamente desde el extranjero o México, esto significa que Estados Unidos ahora está libre de moscas mexicanas de la fruta (Nappo 2012).

Figura 2. Incidencia de la mosca mexicana de la fruta, Anastrepha ludens (Loew), en Florida. Dibujo de G. J. Steck y B. D. Sutton, División de Industria Vegetal.

En 2003, se encontraron larvas vivas en el condado de Pinellas, en chiles manzano que se originaron en México. Sin embargo, el descubrimiento de adultos en Florida ha sido sorprendentemente raro. Se detectó un solo espécimen en una trampa de señuelos múltiples en Orlando en 2003, y un extenso programa de prospección no arrojó más especímenes. Anteriormente, una sola mosca fue capturada en una trampa McPhail en Sarasota en 1972 (Clark et al. 1996). Dos especímenes (un macho y una hembra), etiquetados como `` Key West, 22-IX-34, en Spondias mombin Jacq., O.D. Link Coll., S.P.B. Acc. No. 52582, '' están presentes en la Colección de Artrópodos del Estado de Florida.

Descripción (volver al principio)

El genero Anastrepha comprende alrededor de 200 especies distribuidas por las Américas. La mayoría de las especies se caracterizan por su cuerpo y coloración de alas de amarillo a marrón, patrón distintivo de alas de bandas costales, S y V invertidas (C, S y V), y hembras con vainas ovipositorias tubulares relativamente largas. La vena medial (M1) se curva hacia adelante en la punta del ala. Anastrepha ludens es una especie bien definida y claramente distinta, aunque existe la posibilidad de una forma separada pero casi indistinguible en el extremo sur de su distribución en Costa Rica (Jiron et al. 1988). El primer tratamiento integral de Anastrepha La taxonomía, que sigue siendo fundamental y útil, es la de Stone (1942).

Adulto: La mosca mexicana adulta de la fruta mide 7 & ndash11 mm de largo, o un poco más grande que una mosca doméstica (6 & ndash7 mm), y es principalmente de color marrón amarillento. La mosca mexicana de la fruta A. ludens, es de apariencia típica de otros miembros del género Anastrepha, pero notable por el largo ovipositor y la vaina de la hembra en relación con el tamaño de su cuerpo. El ovipositor mide 3,35 mm de largo. La mosca de la fruta mexicana se distingue fácilmente de la mosca de la fruta del Caribe, Anastrepha suspensa (Loew), por su ovipositor mucho más largo (solo 1,45 & ndash1,6 mm de largo en suspensa), color de la banda del ala (amarillo pálido en ludens vs marrón oscuro en suspensa), ancho de la banda S (angosta apicalmente, no se extiende a la vena medial en ludens vs ancho y se extiende a la vena medial en suspensa), y el color de las setas torácicas (uniformemente pálido en ludens vs oscuridad en suspensa).

Los adultos pueden tener una vida muy larga, hasta 11 meses, y ser muy fecundos, poniendo 1.500 huevos o más. Baker et al. (1944) véanse también amplias referencias en Aluja (1994).

Figura 3. Ala de la mosca caribeña de la fruta, A. suspensa. Foto de Jeffrey Lotz, División de Industria Vegetal.

Figura 4. Ala de la mosca mexicana de la fruta, A. ludens. Foto de Jeffrey Lotz, División de Industria Vegetal.

Larva: Las descripciones de las larvas se hicieron a partir de especímenes criados y verificados adquiridos en el Museo Nacional de Historia Natural de EE. UU. (USNM), Washington, y de otros lotes identificados de especímenes larvarios en la Colección de Artrópodos del Estado de Florida (FSCA). No obstante, estos especímenes no dieron como resultado una configuración del esqueleto cefalofaríngeo exactamente como se publicó en las ilustraciones de Phillips (1946) y Pruitt (1953). Varias poblaciones de cada especie de mosca de la fruta exhiben evidentemente variaciones en este y otros caracteres que deben tenerse en cuenta. Sin embargo, las principales características de cada especie parecen ser constantes y permiten una identificación relativamente fácil. El esqueleto cefalofaríngeo no suele examinarse en las identificaciones de rutina porque la muestra de larva debe disecarse antes de poder examinar este carácter.

La larva de la mosca de la fruta mexicana es blanca con la forma larvaria típica de la mosca de la fruta: cilíndrica, alargada, extremo anterior generalmente algo curvado ventralmente y con ganchos en la boca, extremo caudal aplanado, ocho áreas fusiformes ventrales (una indistinta, entre el tórax y el abdomen), 11 segmentos al cuerpo). Los últimos estadios suelen tener 9 & ndash12 mm de longitud. Hay de 12 a 14 carinas bucales anteriores. El esqueleto cefalofaríngeo tiene un gancho de boca convexo relativamente grande (largo 2 X ancho), con hipostoma de casi el mismo ancho y el puente dorsal está agrandado. La placa faríngea es más larga que la placa del ala dorsal y tiene un soporte faríngeo largo.

Figura 5. Carina bucal de larva. Dibujo por División de Industria Vegetal.

Figura 6. Esqueleto faríngeo de larva. Dibujo por División de Industria Vegetal.

Los espiráculos anteriores son levemente asimétricos, con una depresión mediana, con 18 túbulos generalmente presentes (rara vez de 12 a 18). El extremo caudal tiene papillules dorsal (D1 & amp D2) e intermedias (11 & amp 12) emparejadas, más un I3 prominente indistinto L1 y V1 D1 & amp D2 en ángulo agudo (ca. 45 & deg) y tan ampliamente separados como I1 & amp I2 I1 & amp I2 menos en ángulo agudo (aproximadamente 30 °) I1, I3 y L1 están aproximadamente en línea recta (aproximadamente a 30 °) e I3 es casi equidistante de L1 e I2.

Figura 7. Espiráculos anteriores de larva. Dibujo por División de Industria Vegetal.

Figura 8. Extremo caudal de la larva. Dibujo por División de Industria Vegetal.

Los espiráculos posteriores son alargados (ca. 5 X ancho), con dos dorsales en ángulo hacia arriba y uno ventral en ángulo hacia abajo a cada lado de la mediana. Los procesos interespiraculares (pelos) están en su mayoría ramificados distalmente. El lóbulo anal suele ser bífido (cada lóbulo dividido), pero a veces completo (la variación del lóbulo anal requiere más estudios para determinar si representa una o dos especies, o un híbrido). [Descrito del lote USNM de Chihuahua, México.] Ver Carrol & amp Wharton (1989) para una descripción muy detallada y bien ilustrada de todas las etapas inmaduras de la mosca de la fruta mexicana.

Figura 9. Espiráculos posteriores (grupo izquierdo) de larva. Dibujo por División de Industria Vegetal.

Figura 10. Lóbulos anales de larva. Dibujo por División de Industria Vegetal.

Identificación precisa de larvas de A. ludens y otras especies de Anastrepha es difícil. Mosca mexicana de la fruta y mosca caribeña de la fruta, Anastrepha suspensa (Loew), las larvas (últimos estadios) se pueden separar de la siguiente manera:

1. Lóbulos anales generalmente bífidos (cada lóbulo dividido) carina bucal 12 a 14 espiráculos anteriores generalmente con 18 túbulos (rara vez 12 a 18) extremo caudal con papílulas dorsales en cada par tan ampliamente separadas como en cada par de papílulas intermedias (distancia entre D1 & amp D2 = I1 & amp I2), y papillules `` laterales '' aparentemente solo & quotsingle '' (papillule I3 no prominente) papillules ventrales espiráculos posteriores prominentes alargados (ca. 1 X 5) y separados medialmente por aproximadamente 3 X la longitud de 1 espiráculo. . . . . A. ludens

2. Lóbulos anales siempre carina bucal completa 8 espiráculos anteriores con 12 a 13 túbulos en el extremo caudal con papílulas dorsales en cada par claramente más juntas que las de cada par de papílulas intermedias (la distancia entre D1 y D2 es la mitad que la de 11 y 12), y Papillules "laterales" con un "par" distinto de papillules a cada lado de los espiráculos posteriores (13 prominentes) papillules ventrales usualmente espiráculos posteriores indistintos de longitud promedio (ca. 1 X 3) y separados medialmente por aproximadamente 2 X la longitud de 1 espiráculo. . . . . A. suspensa

Caracteres clave adicionales para separar A. ludens de A. suspensa y otros 11 Anastrepha especies se encuentran en Steck et al. (1990)

Ciclo de vida (volver al principio)

Los adultos pueden sobrevivir durante muchos meses, en ocasiones casi un año completo, y los machos parecen ser capaces de sobrevivir mucho más tiempo que las hembras, incluso hasta 16 meses. La hembra adulta generalmente oviposita en cítricos y otras frutas en el momento en que la fruta comienza a mostrar color. Los huevos generalmente se ponen en grupos de alrededor de diez y eclosionan en seis a 12 días. Las larvas recién nacidas comen y se entierran en la pulpa de la fruta, adoptando el color de su comida, de modo que cuando son pequeñas se pasan por alto fácilmente. Se pueden encontrar muchos gusanos en una sola fruta. Cuando están completamente desarrolladas, las larvas emergen a través de orificios de salida visibles, generalmente después de que la fruta ha caído al suelo, y pupan en el suelo. El desarrollo de las larvas requiere aproximadamente de tres a cuatro semanas, dependiendo en gran medida de las condiciones de temperatura durante estos períodos de desarrollo. El desarrollo es más rápido donde prevalecen temperaturas comparativamente más altas y, como regla general, cuanto más corto es el período de maduración del fruto, más rápido es el desarrollo de la larva.

Figura 11. Huevo de la mosca mexicana de la fruta, A. ludens, en comparación con otros comunes Anastrepha especies.

Hospedadores

Todas las variedades de cítricos, excepto los limones y las limas ácidas, son atacadas. La toronja es el anfitrión preferido, con las naranjas en segundo lugar. Se prefieren la pera, el melocotón y la manzana entre los hospedadores de hoja caduca, y el zapote blanco y el mango se prefieren entre las frutas subtropicales.

Aunque no es un huésped preferido, el aguacate también es atacado. Otros huéspedes incluyen chirimoya, chirimoya, mamey, granada, membrillo, pomarrosa y chapote amarillo. Aún otras frutas y verduras han sido infestadas en condiciones de laboratorio (Baker et al. 1944), incluyendo cactus, higos, plátanos, tomates, pimientos, calabazas y frijoles.

Figura 12. Moscas mexicanas de la fruta, Anastrepha ludens (Loew), poniendo huevos en pomelo durante una prueba de laboratorio. Fotografía de Jack Dykinga, USDA.

Figura 13. En la toronja, así como en muchas otras frutas, una mosca de la fruta mexicana hembra, Anastrepha ludens (Loew), puede depositar una gran cantidad de huevos: hasta 40 huevos a la vez, 100 o más al día, y alrededor de 2000 a lo largo de su vida. Fotografía de Jack Dykinga, USDA.

Hosts registrados (volver al principio)

Anacardium occidentale, anacardo
Annona cherimola, chirimoya
Annona reticulata, chirimoya
Annona squamosa, manzana de azúcar
Carica papaya, papaya
Casimiroa edulis, zapote blanco
Casimiroa tetrameria, matasano
Citrus aurantiifolia, Lima
Máximos de cítricos, pomelo
Citrus aurantium, naranja agria
Citrus limetta, lima dulce
Citrus x paradisi, pomelo
Citrus medica, cidra
Citrus reticulata, Mandarina
Citrus sinensis, naranja dulce
Coffea arabica, café arábica
Cydonia oblonga, membrillo
Diospyros kaki, Caqui japonés
Feijoa sellowiana, feijoa
Inga spp.
Malus domestica, manzana
Malus pumila, manzana del paraíso
Mammea americana, mamey manzana
Mangifera indica, mango
Capiri de Sideroxylon, árbol matón
Passiflora edulis, granadilla morada
Persea americana, palta
Pouteria sapota, zapote
Prunus persica, Durazno
Psidium guajava, guayaba común
Psidium littorale, fresa guayaba
Punica granatum, granada
Pyrus communis, pera
Sargentia greggii, chapote amarillo
Spondias purpurea, rojo mombin
Syzygium jambos, manzana rosa

Lista tomada de White y Elson-Harris (1992) y Hernandez-Ortiz (1992).

Gestión (volver al principio)

Una infestación de moscas de la fruta mexicana no se controla fácilmente a pequeña escala, como los propietarios de viviendas. Las etapas de huevo y larva dentro de la fruta están a salvo de los tratamientos insecticidas. La etapa adulta es susceptible de control, generalmente mediante un cebo de corta duración compuesto por un insecticida de contacto mezclado con proteínas y carbohidratos. Esto se aplica como gotitas finas al follaje de la planta hospedante donde se alimentan los adultos. Sin embargo, los adultos son muy móviles y se mueven fácilmente de los árboles cercanos sin tratar a los árboles tratados después de unos días. En una escala comercial más grande, como un huerto de cítricos, los árboles hospedantes pueden tratarse con cebo rociado como se describió anteriormente, y la inmigración de nuevos adultos puede minimizarse mediante la eliminación de otras plantas hospedantes en un área de amortiguamiento circundante. El control en toda el área también es posible mediante la liberación masiva de machos esterilizados y criados en laboratorio para competir con los machos fértiles silvestres y reducir el número de huevos fertilizados puestos.

Como otro Anastrepha especies, A. ludens no responde a ningún atrayente sexual conocido que pueda emplearse de manera útil en un sistema de detección de trampas. Esto contrasta fuertemente con algunas otras plagas graves de la mosca de la fruta, como la mosca mediterránea de la fruta, Ceratitis capitata (Wiedemann) y mosca oriental de la fruta, Bactrocera dorsalis Hendel, para el cual se encuentran disponibles poderosos atrayentes sexuales masculinos y se utilizan en trampas para detectar poblaciones al principio del proceso de invasión. En cambio, los sistemas de detección de plagas Anastrepha Las especies dependen del uso de trampas McPhail no específicas, húmedas y cebadas con proteínas, que actúan como atrayentes alimentarios generales, especialmente para las hembras jóvenes que buscan proteínas para producir huevos.

La Técnica de Insectos Estériles se utiliza para mantener una zona libre de moscas en México, Texas y California. La tecnología para los programas de erradicación utilizados para mantener estas zonas está respaldada por la investigación del laboratorio USDA-ARS en Weslaco, Texas, y los laboratorios Sanidad Vegetal en México. Ambos grupos de investigación cooperan con los departamentos de Protección y Cuarentena de Plantas y Servicios Internacionales de USAD-APHIS para establecer protocolos y ejecutar programas de liberación de insectos estériles.

La captura no es un buen método para estimar las poblaciones de esta mosca de la fruta. Sin embargo, cortar la fruta después de la cosecha o al final de la temporada es un buen método para estimar las poblaciones. Si una mosca queda atrapada en un huerto, toda la fruta de ese huerto se pone en cuarentena durante dos semanas. Se liberan más moscas estériles en la zona. Si se encuentra una segunda mosca salvaje, la cuarentena se extiende por un año (Robacher 1993).

Cuarentena (volver al principio)

Se están llevando a cabo campañas continuas de detección, prospección y erradicación en las secciones de cítricos cultivados del noroeste de México adyacentes a California, y ocasionalmente en la parte sur de California cuando se detectan nuevas invasiones. Se requiere la esterilización de la fruta antes del envío desde las áreas en cuarentena. A las naranjas, limas dulces, toronjas, mangos, zapotes, duraznos, guayabas y ciruelas se les niega la entrada de México a los Estados Unidos por la Cuarentena Federal No. 5. La Cuarentena Federal No. 64 fue promulgada para prevenir el envío de ciertas frutas (mangos, zapotes , melocotones, guayabas, manzanas, peras, ciruelas, membrillos, albaricoques, mameys, ciruelas y frutas cítricas, excepto limones y limas agrias) de varios condados de Texas a otras partes del país, excepto bajo certificación del Departamento de Agricultura de EE. UU. Sin embargo, con la erradicación de la mosca mexicana de la fruta en los Estados Unidos en 2012, esta cuarentena ya no está en vigor (NAPPO 2012).

Referencias seleccionadas (volver al principio)

  • Aluja M. 1994. Bionomics and management of Anastrepha. Revisión anual de entomología 39: 155-178.
  • Berg GH. 1979. Clave pictórica de las larvas de la mosca de la fruta de la familia Tephritidae. San Salvador: Órgano. Internac. Sanidad Regional. Agropec. 36 págs.
  • Carroll LE, Wharton RA. 1989. Morfología de las etapas inmaduras de Anastrepha ludens (Diptera: Tephritidae). Anuales de la Sociedad Entomológica de América 82: 201-214.
  • Clark RA, Steck GJ, Weems Jr HW. 1996. Detección, cuarentena y erradicación de moscas exóticas de la fruta en Florida, págs. 29-54. En D.L. Rosen (editor), Manejo de plagas en los subtrópicos: Manejo integrado de plagas: una perspectiva de Florida. Intercept Ltd. Andover Reino Unido.
  • Dickens JC, Solis E, Hart WG. 1982. Desarrollo sexual y comportamiento de apareamiento de la mosca mexicana de la fruta, Anastrepha ludens (Loew). El entomólogo del suroeste 7: 9-15.
  • Ebeling W. 1959. Plagas de frutas subtropicales. Universidad de California, División de Ciencias Agrícolas 436 págs.
  • Hernandez-Ortiz V. 1992. El genero Anastrepha Schiner en Mexico (Diptera: Tephritidae), Taxonomia, distribucion y sus plantas huespedes. Instituto de Ecología, Xalapa México. 162 págs.
  • Greene CT. 1929. Caracteres de las larvas y pupas de ciertas moscas de la fruta. Revista de Investigación Agrícola 38: 489-504.
  • Ibrahim RB. 1980. Moscas de la fruta de Florida (Diptera: Tephritidae). Gainesville: Universidad de Florida. 355 pp. Tesis doctoral.
  • Jiron LF, Soto-Manitiu J, Norrbom AL. 1988. Una lista preliminar de las moscas de la fruta del género Anastrepha (Diptera: Tephritidae) en Costa Rica. Entomólogo de Florida 71: 130-137.
  • Phillips VT. 1946. Biología e identificación de larvas de tríptidos (Diptera: Trypetidae). Memorias de la Sociedad Entomológica Estadounidense 12: 161.
  • Pruitt JH. 1953. Identificación de larvas de mosca de la fruta frecuentemente interceptadas en los puertos de entrada de los Estados Unidos. Tesis de maestría. Universidad de Florida, Gainesville. 69 págs.
  • Robacher D, Magan RL. 1993. Programa ARS sobre Anastrepha especies para cumplir con los requisitos de cuarentena vegetal del APHIS. Seminario de la Universidad de Florida.
  • Steck GJ, Carroll LE, Celedonio-H H, Guillen-A J. 1990. Métodos para la identificación de Anastrepha larvas (Diptera: Tephritidae) y clave para 13 especies. Actas de la Sociedad Entomológica de Washington 92: 356-369.
  • Stone A. 1942. Las moscas de la fruta del género Anastrepha. Publicaciones diversas del USDA No. 439, Washington, DC. 112 págs.
  • Blanco IM, Elson-Harris MM. 1994. Moscas de la fruta de importancia económica: su identificación y bionómica. CAB International. Oxon, Reino Unido. 601 págs.

Diseño web: Don Wasik, Jane Medley
Número de publicación: EENY-201
Fecha de publicación: marzo de 2001. Última revisión: marzo de 2012. Revisado: agosto de 2015.


¿Qué están haciendo estas dos moscas de la fruta? - biología

Asignaciones de FlyLab de Biología AP

Para comenzar un experimento, primero debe diseñar los fenotipos de las moscas que se aparearán. Además de las moscas de tipo salvaje, 29 mutaciones diferentes de la mosca común de la fruta, Drosophila melanogaster , están incluidos en FlyLab. Las 29 mutaciones son mutaciones conocidas reales en Drosophila. Estas mutaciones crean cambios fenotípicos en la forma de las cerdas, el color del cuerpo, la forma de las antenas, el color de los ojos, la forma del ojo, el tamaño del ala, la forma del ala, la estructura de las venas del ala y el ángulo del ala. Para los propósitos de la simulación, la herencia genética en FlyLab sigue los principios mendelianos de dominio completo. No se demuestran ejemplos de dominancia incompleta con esta simulación. Se puede ver una tabla de los fenotipos mutantes disponibles en FlyLab haciendo clic en la pestaña Abreviaturas genéticas que aparece en la parte superior de la página de inicio de FlyLab. Cuando selecciona un fenotipo en particular, no se le proporciona ninguna información sobre el dominio o la recesión de cada mutación. FlyLab seleccionará una mosca que sea homocigótica para la mutación particular que elija, a menos que una mutación sea letal en la condición homocigótica, en cuyo caso la mosca elegida será heterocigótica. Dos de sus desafíos serán determinar la cigosidad de cada mosca en su cruce y determinar los efectos de cada alelo analizando la descendencia de sus cruces.

Una ventaja de FlyLab es que tendrá la oportunidad de estudiar la herencia en un gran número de descendientes. FlyLab también introducirá una desviación experimental aleatoria de los datos como ocurriría en un experimento real. Como resultado, el análisis estadístico que aplicará a sus datos al realizar el análisis de chi-cuadrado le proporcionará un análisis muy preciso y realista de sus datos para confirmar o refutar sus hipótesis.

Para facilitar la realización de cada tarea, el texto de fondo relevante para el experimento que realizará es en cursiva, las instrucciones para cada tarea se indican en texto sin formato, y las preguntas o actividades para las que se le pedirá que proporcione respuestas se indican mediante texto en negrita.

Tarea 1:
Conociendo
FlyLab : Realización de cruces monohíbridos, dihíbridos y trihíbridos

  1. Para comenzar un cruce, primero debes seleccionar los fenotipos de las moscas que deseas aparear. Siga las instrucciones a continuación para crear un cruce monohíbrido entre una mosca hembra de tipo salvaje y una mosca macho con ojos sepia.
    1. Para diseñar una mosca hembra de tipo salvaje, haga clic en el botón Diseño debajo de la imagen gris de la mosca hembra. Haga clic en el botón del rasgo Color de ojos en el lado izquierdo de la vista Diseño. El pequeño botón junto a las palabras & quot; Tipo salvaje & quot ya debería estar seleccionado (en negrita). Para elegir este fenotipo, haga clic en el botón Seleccionar debajo de la imagen de la mosca en la parte inferior de la pantalla de diseño. Recuerde que esta mosca representa un progenitor de reproducción verdadera que es homocigoto para los alelos de tipo salvaje. La mosca hembra seleccionada ahora aparece en la pantalla con un símbolo & quot + & quot que indica el fenotipo de tipo salvaje.
    2. Para diseñar una mosca macho con ojos sepia, haga clic en el botón Diseño debajo de la imagen gris de la mosca macho. Haga clic en el botón del rasgo Color de ojos en el lado izquierdo de la vista Diseño. Haga clic en el botón pequeño al lado de la palabra & quotSepia & quot. Observe cómo el color de ojos de esta mosca se compara con el color de ojos de tipo salvaje. Elija esta mosca haciendo clic en el botón Seleccionar debajo de la imagen de la mosca en la parte inferior de la pantalla Diseño. La mosca macho ahora aparece en la pantalla con la abreviatura "SE" que indica la mutación del ojo sepia. Esta mosca es homocigótica para el alelo del ojo sepia. Estas dos moscas representan la generación parental (generación P) de su cruce.
    3. Basándose en lo que sabe sobre los principios de la genética mendeliana, predice la proporción fenotípica que esperaría ver para la F1 descendientes de este cruce y describen el fenotipo de cada mosca.
    4. Para seleccionar el número de crías que se crearán mediante este apareamiento, haga clic en el menú emergente en el lado izquierdo de la pantalla y seleccione 10,000 moscas. Para aparear las dos moscas, haga clic en el botón Mate entre las dos moscas. Tenga en cuenta las imágenes de moscas que aparecen en el cuadro en la parte inferior de la pantalla. Desplácese hacia arriba para ver las moscas parentales y hacia abajo para ver la descendencia de tipo salvaje. Estos descendientes son los F1 Generacion. Son los fenotipos de la F1 descendencia, ¿qué habrías predicho para esta cruz? ¿Por qué o por qué no?Nota: El número real de F1 La descendencia creada por FlyLab no es exactamente igual a la descendencia 10,000 que seleccionó. Esta diferencia representa el error experimental introducido por FlyLab.
    5. Para guardar los resultados de esta cruz en sus notas de laboratorio, haga clic en el botón Resumen de resultados en la parte inferior izquierda de la pantalla. Aparecerá un panel con un resumen de los resultados de este cruce. Tenga en cuenta el número de descendientes, la proporción de cada fenotipo y las proporciones observadas para cada fenotipo observado. Haga clic en el botón Agregar a notas de laboratorio en la parte inferior del panel. Haga clic en el botón Aceptar para cerrar este panel. Para comentar estos resultados en sus notas de laboratorio, haga clic en el botón Notas de laboratorio y mueva el cursor al espacio sobre la línea discontinua y escriba un comentario como, & quot Estos son los resultados de la F1 generación para mi primer cruce monohíbrido. & quot Haga clic en el botón Cerrar para cerrar este panel y volver a la pantalla Mate.
    6. Para configurar un cruce entre dos F1 descendencia para producir una F2 generación, asegúrese de estar mirando las dos moscas descendientes de tipo salvaje en el cuadro en la parte inferior de la pantalla. De lo contrario, desplácese hasta la parte inferior de este cuadro hasta que aparezca la palabra & quot; Procedencia & quot en el centro del cuadro. Haga clic en el botón Seleccionar debajo de la imagen de la mosca de tipo salvaje hembra, luego haga clic en el botón Seleccionar debajo de la imagen de la mosca de tipo salvaje macho. Tenga en cuenta que los dos F1 la descendencia que acaba de seleccionar aparece en la parte superior de la pantalla como las moscas elegidas para su nuevo apareamiento. Haga clic en el botón Mate entre las dos moscas. La F2 La generación de moscas ahora aparece en el cuadro en la parte inferior de la pantalla. Utilice los botones de desplazamiento para ver los fenotipos de la F2 descendencia.
    7. Examine los fenotipos de la descendencia producida y guarde los resultados en sus notas de laboratorio haciendo clic en el botón Resumen de resultados en la parte inferior izquierda de la vista Mate. Tenga en cuenta las proporciones fenotípicas observadas de la F2 descendencia. Haga clic en el botón Agregar a notas de laboratorio en la parte inferior del panel. Haga clic en el botón Aceptar para cerrar el panel.
    8. Para validar o rechazar una hipótesis, realice un análisis de chi-cuadrado de la siguiente manera. Haga clic en el botón Prueba de Chi-Cuadrado en la parte inferior izquierda de la pantalla. Para ignorar los efectos del sexo en esta cruz, haga clic en el botón Ignorar sexo. Ingrese una razón pronosticada para una hipótesis que desee probar. Por ejemplo, si desea probar una proporción de 4: 1, ingrese un 4 en el primer cuadro debajo de la columna Hipótesis e ingrese un 1 en el segundo cuadro. Para evaluar los efectos del sexo en este cruce, simplemente escriba un 4 en cada uno de los dos primeros cuadros y escriba un 1 en cada uno de los dos últimos cuadros. Haga clic en el botón Probar hipótesis en la parte inferior del panel. Aparecerá un nuevo panel con los resultados del análisis de chi-cuadrado. Tenga en cuenta el nivel de significancia que se muestra con una recomendación para rechazar o no rechazar su hipótesis. ¿Cuál fue la recomendación de la prueba de chi-cuadrado? ¿Tu relación fue aceptada o rechazada? Haga clic en el botón Agregar a notas de laboratorio para agregar los resultados de esta prueba a sus notas de laboratorio. Haga clic en Aceptar para cerrar este panel.
    9. Para examinar y editar sus notas de laboratorio, haga clic en el botón Notas de laboratorio en la esquina inferior izquierda de la pantalla. Haga clic en el cursor debajo de la línea de recomendación y escriba lo siguiente: & quot Estos son mis resultados para la F2 generación de mi primer cruce monohíbrido. Estos datos no parecen seguir una proporción de 4: 1. & Quot Para imprimir sus notas de laboratorio, puede exportar esta tabla de datos como un archivo html haciendo clic en el botón Exportar. En unos segundos, debería aparecer una nueva ventana del navegador con una copia de sus notas de laboratorio. Ahora puede guardar este archivo en el disco y / o imprimir una copia de sus notas de laboratorio. Haga clic en el botón Cerrar en la parte inferior del panel para cerrar el panel.
    10. Repita el análisis de chi-cuadrado con una nueva razón hasta que descubra una razón que no será rechazada. ¿Cuál descubrió que es la proporción fenotípica correcta para este experimento? ¿Era esto lo que esperabas? ¿Por qué o por qué no? ¿Qué le dicen los resultados de este experimento sobre la dominancia o recesión del alelo sepia para el color de ojos?

    ¿Qué efecto, si lo hay, tiene esto sobre los resultados producidos y su capacidad para realizar análisis de chi-cuadrado en estos datos? Si alguno de sus cruces no sigue un patrón de herencia esperado, proporcione posibles razones para explicar sus resultados.

    1. Una vez que se sienta cómodo con el uso de FlyLab para realizar un cruce monohíbrido, diseñe un cruce dihíbrido seleccionando y cruzando una mosca hembra de cuerpo de ébano con una mosca macho que tenga la mutación vestigial para el tamaño del ala.

    Desarrolle una hipótesis para predecir los resultados de este cruce y describa cada fenotipo que esperaría ver tanto en el F1 y F2 generaciones de esta cruz.

    Analice los resultados de cada cruce mediante el análisis de chi-cuadrado y guarde sus datos en sus notas de laboratorio como se describió anteriormente en las asignaciones para un cruce monohíbrido.

    Describe los fenotipos que observaste tanto en la F1 y F2 generaciones de esta cruz. ¿Cómo se ve la relación fenotípica observada para la F2 generación comparada con la proporción fenotípica predicha? Explica tu respuesta.

    1. Use FlyLab para realizar un cruce trihíbrido diseñando y cruzando una mosca hembra de tipo salvaje y una mosca macho con forma de ala rechoncha, color de cuerpo de ébano y cerdas afeitadas.

    Desarrolle una hipótesis para predecir los resultados de este cruce y describa cada fenotipo que esperaría ver en la F2 generación de esta cruz. Realice su cruz y evalúe su hipótesis mediante el análisis de Chi-cuadrado. ¿Cuál fue la relación fenotípica trihíbrida producida para la F2 ¿Generacion?

    A testcross es una forma valiosa de utilizar un cruce genético para determinar el genotipo de un organismo que muestra un fenotipo dominante pero un genotipo desconocido. Por ejemplo, utilizando los guisantes de Mendel, una planta de guisantes con flores de color púrpura como fenotipo dominante podría tener un genotipo homocigoto o heterocigoto. Con un cruce de prueba, el organismo con un genotipo desconocido para un fenotipo dominante se cruza con un organismo que es homocigoto recesivo para el mismo rasgo. En las industrias de reproducción animal y vegetal, los cruces de prueba son una forma de determinar el genotipo desconocido de un organismo con un rasgo dominante. Realice el siguiente experimento para ayudarlo a comprender cómo se puede utilizar un cruce de prueba para determinar el genotipo de un organismo.

    1. Diseñe una mosca hembra con color de ojos marrones (BW) (mantenga todos los demás rasgos como de tipo salvaje) y diseñe una mosca macho con el color del cuerpo de ébano (E mantenga todos los demás rasgos como de tipo salvaje). Mate las dos moscas. Examine la descendencia F1 de este cruce y guarde sus datos en sus notas de laboratorio. Agregue a sus datos los comentarios que desee.

    Para determinar el genotipo de un F1 mosca hembra de tipo salvaje, diseñe una mosca macho con color de ojos marrones y color de cuerpo de ébano, luego cruce esta mosca con una F1 mosca hembra de tipo salvaje. Examine los resultados de esta cruz y guárdelos en sus notas de laboratorio.

    ¿Cuál fue la proporción fenotípica de la descendencia resultante de este cruce de prueba? Con base en esta proporción fenotípica, determine si la F1 El macho hembra de tipo salvaje era doble homocigoto o doble heterocigoto para los alelos del color de ojos y del color del cuerpo. Explica tu respuesta. Si su respuesta fue doble homocigoto, describa una proporción fenotípica esperada para la descendencia producida a partir de un cruce de prueba con una mosca doble heterocigótica. Si su respuesta fue doble heterocigoto, describa una proporción fenotípica esperada para la descendencia producida a partir de un cruce de prueba con una mosca homocigótica.

    Cinco de las mutaciones en FlyLab son letales cuando son homocigotas. Cuando selecciona una mutación letal en la vista Diseño, la mosca se convierte en heterocigota para el alelo mutante. Si selecciona dos mutaciones letales que están en el mismo cromosoma (el mismo grupo de enlace, o la disposición "cis"), los alelos mutantes se colocarán en diferentes cromosomas homólogos (la disposición "trans"). Los cruces que involucran mutaciones letales no mostrarán un déficit en el número de descendientes. FlyLab elimina los genotipos letales de la descendencia y "escala" las probabilidades entre los genotipos supervivientes. Por lo tanto, el número total de descendientes será el mismo que para los cruces que involucran solo mutaciones no letales. Realice los siguientes cruces para demostrar cómo las proporciones mendelianas pueden modificarse mediante mutaciones letales.

    1. Diseñe un cruce entre dos moscas con mutaciones de aristapedia para la forma de las antenas. Aparear estas moscas.

    ¿Qué relación fenotípica observó en el F1 ¿Generacion? ¿Cuáles fueron los fenotipos? Realizar una F1 cruce entre dos moscas con el fenotipo aristapedia. ¿Qué proporción fenotípica observaste en la F2 ¿Generacion? ¿Cómo explican estas proporciones y fenotipos que la mutación aristapedia funciona como una mutación letal?

    Para convencerse de que el alelo aristapedia es letal en un homocigoto en comparación con un heterocigoto, realice un cruce entre una mosca de tipo salvaje y una mosca con la mutación aristapedia.

    ¿Qué resultados obtuviste con esta cruz?

    Desarrollar una hipótesis para predecir la razón fenotípica de la F1 Generacion. Aparear estas moscas. ¿Qué relación fenotípica observó en el F1 ¿Generacion?

    Pon a prueba tu hipótesis mediante el análisis de chi-cuadrado. Repita este procedimiento para una F1 cruce entre dos moscas que expresan los fenotipos de ala rizada y cerda de rastrojo.

    ¿Son las proporciones fenotípicas que observó en la F2 generación consistente con lo que cabría esperar de una mutación letal? ¿Por qué o por qué no? Explique sus respuestas.

    El fenómeno genético llamado epistasis ocurre cuando la expresión de un gen depende o modifica la expresión de otro gen. En algunos casos de epistasis, un gen puede enmascarar completamente o alterar la expresión de otro gen. Realice los siguientes cruces para estudiar ejemplos de epistasis en Drosophila.

    1. Diseñe y realice un cruce entre una mosca hembra con un tamaño de ala vestigial y una mosca macho con una mutación incompleta de la vena del ala. Estudie cuidadosamente el fenotipo de esta mosca macho para asegurarse de que comprende el efecto del alelo incompleto.

    ¿Qué observaste en la F1 ¿Generacion? Nota: Puede resultar útil hacer clic hacia arriba y hacia abajo en este cuadro de visualización para comparar de cerca los fenotipos de la F1 y P generaciones.

    ¿Era esto lo que esperabas? ¿Por qué o por qué no? Una vez que haya producido una F1 generación, compañero F1 vuela para generar una F2 Generacion.

    Estudia los resultados de tu F2 generación, luego responda las siguientes preguntas.

    ¿Qué mutación es epistática? ¿La mutación vestigial es dominante o recesiva? Determinar la proporción fenotípica que apareció en el dihíbrido F2 generación y utilice el análisis de chi-cuadrado para aceptar o rechazar esta relación.

    1. Realice otro experimento apareando una mosca hembra con la mutación del tamaño del ala áptera con una mosca macho con la mutación de la estructura de la vena del radio incompleto. Sigue esta cruz hasta la F2 Generacion.

    ¿Qué mutación es epistática? ¿Es la mutación del ala áptera dominante o recesiva?

    Para muchas de las mutaciones que se pueden estudiar con FlyLab, no importa qué padre porta un alelo mutado porque estas mutaciones se encuentran en los autosomas. Los cruces recíprocos producen resultados idénticos. Sin embargo, cuando los alelos se encuentran en los cromosomas sexuales, las diferencias en el sexo de la mosca portadora de un alelo particular producen resultados muy diferentes en las proporciones fenotípicas de la descendencia. La determinación del sexo en Drosophila sigue un sistema cromosómico X-Y que es similar a la determinación del sexo en humanos. Las moscas hembras son XX y los machos XY. Diseñe y realice los siguientes cruces para examinar la herencia de alelos ligados al sexo en Drosophila.

    ¿Qué fenotipos y proporciones observó en el F1 ¿Generacion?

    Mate dos F1 vuela y observe los resultados de la F2 Generacion.

    Basado en lo que sabes sobre la genética mendeliana, ¿la F2 generación demuestra la proporción fenotípica que esperabas? Si no es así, ¿qué proporción fenotípica se obtuvo con este cruce?

    1. Realice un segundo experimento cruzando una mosca hembra con la mutación vestigial del tamaño del ala y un macho de ojos blancos. Describe los fenotipos obtenidos en la F2 Generacion. Examine los fenotipos y sexos de cada mosca.

    ¿Existe una combinación de sexo y fenotipo que esté ausente o subrepresentada? ¿Si es así, Cuál? ¿Qué le dice este resultado sobre la ubicación del cromosoma sexual del alelo del ojo blanco?

    La ley de distribución independiente de Mendel se aplica a los alelos no vinculados, pero genes ligados- genes en el mismo cromosoma - no se clasifican de forma independiente. Sin embargo, los genes vinculados no siempre se heredan juntos debido a cruzando. Cruzando, o recombinación homóloga, ocurre durante la profase de la meiosis I cuando se intercambian segmentos de ADN entre cromosomas homólogos. La recombinación homóloga puede producir combinaciones nuevas y diferentes de alelos en la descendencia. La descendencia con diferentes combinaciones de fenotipos en comparación con sus padres se llama recombinantes. La frecuencia de aparición de recombinantes en la descendencia se conoce como frecuencia de recombinación. La frecuencia de recombinación representa la frecuencia de un evento de cruce entre los loci para los alelos vinculados. Si dos alelos para dos rasgos diferentes están ubicados en diferentes posiciones en el mismo cromosoma (loci heterocigotos) y estos alelos están muy separados en el cromosoma, entonces la probabilidad de un intercambio casual, o recombinación, de ADN entre los dos loci es alta. Por el contrario, los loci que están poco espaciados suelen demostrar una baja probabilidad de recombinación. Las frecuencias de recombinación pueden usarse para desarrollar mapas de genes, donde las posiciones relativas de los loci a lo largo de un cromosoma pueden establecerse mediante el estudio del número de descendientes recombinantes. Por ejemplo, si un cruce dihíbrido de dos genes ligados produce un 15% de descendencia recombinante, esto significa que el 15% de la descendencia se produjo cruzando los loci de estos dos genes. Un mapa genético se muestra como la disposición lineal de genes en un cromosoma. Los lugares se organizan en un mapa de acuerdo con unidades de mapa llamadas centimorgans. Un centimorgan es igual a una frecuencia de recombinación del 1%. En este caso, los dos loci están separados por aproximadamente 15 centimorgans. En Drosophila, a diferencia de la mayoría de los organismos, es importante darse cuenta de que el cruce ocurre durante la formación de gametos solo en moscas hembras. Debido a que el cruzamiento no ocurre en las moscas macho, las frecuencias de recombinación diferirán cuando se comparen las moscas hembras con las moscas macho. Realice los siguientes experimentos para ayudarlo a comprender cómo se pueden usar las frecuencias de recombinación para desarrollar mapas genéticos. En el futuro, tendrá la oportunidad de estudiar el mapeo genético de los cromosomas con más detalle utilizando PedigreeLab.

    1. Para comprender cómo se pueden usar las frecuencias de recombinación para determinar una distancia aproximada del mapa entre genes estrechamente vinculados, cruce una mosca hembra con la mutación sin ojos para la forma del ojo con una mosca macho con cerdas afeitadas. Ambos genes se encuentran en el cromosoma IV en Drosophila. Testcross uno de los F1 hembras a un macho con rasgos de cerda afeitada y sin ojos. La progenie testcross con ambas mutaciones o ninguna mutación (tipo salvaje) se produce cruzando en el doble heterocigoto F1 mujer. El porcentaje de estos fenotipos recombinantes es una estimación de la distancia del mapa entre estos dos genes.

    Dibuje un mapa que muestre la distancia del mapa (en unidades de mapa o centimorgans) entre el lugar del alelo de cerdas afeitadas y el lugar del alelo sin ojos.

    1. Para comprender cómo se pueden usar las frecuencias de recombinación para determinar un mapa genético para tres alelos, empareje una mosca hembra con un cuerpo negro, ojos morados y un tamaño de ala vestigial con un macho de tipo salvaje. Estos tres alelos se encuentran en el cromosoma II en Drosophila. Testcross uno de los F1 hembras a un macho con las tres mutaciones. Las moscas con los fenotipos menos frecuentes deben mostrar los mismos fenotipos que estas moscas complementarias representan cruces dobles.

    ¿Cuál es el fenotipo de estas moscas? ¿Qué le dice esto acerca de la posición del alelo del ojo morado en comparación con los alelos del cuerpo negro y del ala vestigial? Dibuje un mapa genético que indique los loci relativos para cada uno de estos tres alelos e indique la distancia aproximada del mapa entre cada locus.

    Trabajen en parejas para completar la siguiente tarea. Cada par de estudiantes debe diseñar al azar al menos dos cruces dihíbridos separados de moscas con mutaciones para dos personajes diferentes (lo ideal es elegir mutaciones que no haya visto en asignaciones anteriores) y realizar apareamientos de estas moscas. Antes de diseñar sus moscas, consulte la tabla de abreviaturas genéticas en FlyLab para obtener una descripción de cada fenotipo mutado. O vea las diferentes mutaciones disponibles seleccionando una mosca, haciendo clic en cada uno de los diferentes fenotipos y viendo cada fenotipo mutado hasta que seleccione uno que le gustaría seguir. Una vez que hayas apareado con estas moscas, sigue a la descendencia hasta la F2 Generacion.


    Contenido

    Los tefrítidos son moscas de tamaño pequeño a mediano (2.5 a 10 mm) que a menudo son coloridas y generalmente con alas ilustradas, la vena subcostal se curva hacia adelante en ángulo recto. La cabeza es hemisférica y generalmente corta. La cara es vertical o retraída y los frons son anchos. Los ocelos y las cerdas de la bodega están presentes. Las cerdas postverticales son paralelas a divergentes. Se ven de dos a ocho pares de cerdas frontales (al menos uno, pero generalmente varios pares inferiores curvados hacia adentro y al menos uno de los pares superiores curvándose hacia atrás). En algunas especies, las cerdas frontales se insertan en un tubérculo elevado. Las sétulas interfrontales suelen estar ausentes o representadas por una o dos diminutas sétulas cerca de la lúnula. Las verdaderas vibrisas están ausentes, pero varios géneros tienen cerdas fuertes cerca del ángulo vibrisal. Las alas suelen tener marcas amarillas, marrones o negras o son de color oscuro con marcas más claras. En algunas especies, las alas son claras. La costa tiene una rotura tanto humeral como subcostal. La parte apical del subcostal suele ser indistinta o incluso transparente y forma un ángulo recto con respecto a la parte basal. Crossvein BM-Cu está presente, la copa celular (celda cubital posterior o celda anal) está cerrada y casi siempre se estrecha en un ángulo agudo. Está cerrado por una vena geniculada (CuA2). La vena CuA2 rara vez es recta o convexa. Las tibias carecen de una cerda preapical dorsal. La hembra tiene un oviscape.

    La larva es anfipinésica (solo tiene los pares de espiráculo anterior y posterior). El cuerpo varía de blanco a amarillento o marrón. El extremo posterior de las especies de color pálido es a veces negro. El cuerpo se estrecha en la parte anterior. Las dos mandíbulas a veces tienen dientes a lo largo del margen ventral. Los lóbulos antenomaxilares a cada lado de las mandíbulas tienen varias crestas orales transversales o láminas cortas dirigidas hacia atrás. Los espiráculos anteriores (espiráculos protorácicos) terminan sin rodeos y no son alargados. Cada uno tiene al menos tres aberturas o hasta 50 dispuestas transversalmente en uno a tres grupos o de forma irregular. Cada espiráculo posterior (espiráculo anal) carece de un peritrema claramente definido y cada uno tiene tres aberturas espiraculares (en larvas maduras). Suelen ser más o menos horizontales, paralelas y suelen tener pelos espiráculos ramificados en cuatro mechones. [1] [2]

    Las larvas de casi todos los Tephritidae son fitófagos. Las hembras depositan huevos en tejido vegetal vivo y sano utilizando sus ovipositores telescópicos. Aquí, las larvas encuentran su alimento al emerger. Las larvas se desarrollan en hojas, tallos, flores, semillas, frutos y raíces de la planta huésped, según la especie. Algunas especies forman agallas. Una excepción al estilo de vida fitófago es Euphranta toxoneura (Loew) cuyas larvas se desarrollan en agallas formadas por moscas sierra. Los adultos a veces tienen una vida muy corta. Algunos viven menos de una semana. Algunas especies son monófagas (se alimentan de una sola especie de planta), otras son polífagas (se alimentan de varias especies de plantas, generalmente relacionadas).

    La ecología del comportamiento de las moscas tefrítidas de la fruta es de gran interés para los biólogos. Algunas moscas de la fruta tienen extensos rituales de apareamiento o exhibiciones territoriales. Muchos son de colores brillantes y visualmente llamativos. Algunas moscas de la fruta muestran un mimetismo batesiano, con los colores y las marcas de artrópodos peligrosos como las avispas o las arañas saltarinas, ya que ayuda a las moscas de la fruta a evitar la depredación, aunque las moscas carecen de aguijones.

    Las moscas tefrítidas adultas de la fruta se encuentran a menudo en la planta huésped y se alimentan de polen, néctar, restos de plantas en descomposición o melaza.

    Los enemigos naturales incluyen Diapriidae y Braconidae.

    Las moscas tefrítidas de la fruta son de gran importancia económica en la agricultura. Algunos tienen efectos negativos, otros positivos. Varias especies de moscas de la fruta causan daños a las frutas y otros cultivos de plantas. El genero Bactrocera es de notoriedad mundial por su impacto destructivo en la agricultura. La mosca del olivoB. oleae), por ejemplo, se alimenta de una sola planta: el olivo silvestre o cultivado comercialmente, Olea europaea. Tiene la capacidad de arruinar el 100% de una cosecha de olivo dañando el fruto. Bactrocera dorsalis es otra especie de plaga altamente invasiva que daña los cultivos de frutas, verduras y nueces tropicales. Euleia heraclei es una plaga del apio y la chirivía. El genero Anastrepha incluye varias plagas importantes, en particular A. grandis, A. ludens (Mosca mexicana de la fruta), A. obliqua, y A. suspensa. Otras plagas son Strauzia longipennis, una plaga de girasoles y Rhagoletis mendax, una plaga de los arándanos. Otra plaga agrícola notoria es la mosca mediterránea de la fruta o moscamed, Ceratitis capitata, que es responsable de millones de dólares en gastos de los países para los esfuerzos de control y erradicación, además de los costos de los daños a los cultivos de frutas. De manera similar, la mosca de la fruta de Queensland (Bactrocera tyroni) es responsable de más de $ 28,5 millones en daños a los cultivos de frutas australianos al año. Esta especie pone huevos en una amplia variedad de hospedadores de frutas inmaduras, lo que hace que se pudran antes de la maduración. [3]

    Algunas moscas de la fruta se utilizan como agentes de control biológico, reduciendo así las poblaciones de especies de plagas. Varias especies del género Urophora se utilizan como agentes de control contra las malezas nocivas que destruyen los pastizales, como los zorzales y la mala hierba, pero su eficacia es cuestionable. [4] Urophora sirunaseva produce larvas que pupan dentro de una agalla leñosa dentro de la flor e interrumpen la producción de semillas. [5] Chaetorellia acrolophi es un agente de biocontrol eficaz contra la mala hierba Chaetorellia australis y Chaetorellia succinea, depositan los huevos en las cabezas de semillas de los arbustos, donde sus larvas consumen las semillas y los ovarios de las flores. [6]

    Dado que existen en todo el mundo moscas tefrítidas de la fruta de importancia económica, vastas redes de investigadores, varios simposios internacionales y actividades intensivas sobre diversos temas se extienden desde la ecología hasta la biología molecular (Base de datos de trabajadores tefrítidos).

    Las técnicas de manejo de plagas aplicadas a los tefrítidos incluyen el uso de rociadores de cobertura con pesticidas convencionales, sin embargo, debido al impacto deletéreo de estos pesticidas, se han utilizado técnicas de control de plagas nuevas, menos impactantes y más específicas, como cebos de alimentos tóxicos, técnica de aniquilación de machos usando paraferomonas atrayentes masculinas específicas en cebos tóxicos o trampas masivas, o incluso técnicas de insectos estériles como parte del manejo integrado de plagas.

    Tephritidae se divide en varias subfamilias: [7]

      (5 géneros, 34 especies) (41 géneros, 1066 especies) (95 géneros, 331 especies) (8 géneros, 18 especies) (211 géneros, 1859 especies) (118 géneros, 1012 especies)

    Los géneros Oxyphora, Pseudorelia, y Stylia comprenden 32 especies, y no están incluidas en ninguna subfamilia (incertae sedis).


    Pregunta : Introducción a las moscas de la fruta Las moscas de la fruta son un modelo de laboratorio popular para seguir las leyes de la genética mendeliana. Una de las razones de su popularidad es su corto ciclo de vida. Las moscas de la fruta tienen un ciclo de vida de 10 a 12 días en estado salvaje. Su ciclo de vida tiene 4 etapas: embrión, larva, pupa y adulto. Antes de que uno pueda establecer con éxito un esquema de apareamiento en

    Las moscas de la fruta son un modelo de laboratorio popular para seguir las leyes de la genética mendeliana. Una de las razones de su popularidad es su corto ciclo de vida. Las moscas de la fruta tienen un ciclo de vida de 10 a 12 días en estado salvaje. Su ciclo de vida tiene 4 etapas: embrión, larva, pupa y adulto. Antes de que uno pueda establecer con éxito un esquema de apareamiento en las moscas, es imperativo diferenciar entre los dos sexos. Como adultos, los machos se pueden distinguir de las hembras en función de 3 características clave: tamaño de la mosca (los machos son más pequeños que las hembras), pigmentación en la parte inferior del abdomen (negro en los hombres)y la presencia de cerdas / peines sexuales en las extremidades anteriores (presentes en los machos, ausentes en las hembras).

    Reemplazar con ID de ilustración en stock libre de regalías: 1036203655 Figura 9.3

    Figura 9.4: a) Ciclo de vida de Drosofilia (aproximadamente 10-12 días dependiendo de la temperatura). b) Esquema de Drosophila melanogaster. © bluedoor, LLC

    Investigación 3: Herencia de rasgos únicos en moscas de la fruta y herencia ligada al sexo

    Dos de los rasgos que examinaremos, el color del cuerpo y la longitud del ala, son herencia autosómica. Los alelos se encuentran en autosomas que podría ser cualquier cromosoma distintos de los cromosomas sexuales.

    Como en otros organismos vivos, los rasgos humanos se heredan de acuerdo con las leyes de la genética mendeliana. Muchos rasgos implican la interacción de varios genes, lo que da como resultado la variación que vemos incluso entre hermanos y hermanas. Sin embargo, algunos rasgos están controlados por genes únicos que tienen efectos fenotípicos notables.

    • Observar y calificar los resultados de cruces genéticos en moscas de la fruta que involucran un rasgo, dos rasgos y determinar si un rasgo es dominante, recesivo o ligado al sexo.
    • Ser capaz de distinguir entre moscas macho y hembra basándose en las marcas corporales.

    En genética, "tipo salvaje" significa normal. Estudie la fotografía de la mosca de "tipo salvaje" a continuación. Específicamente, tome nota de tres rasgos, el color del cuerpo, la longitud del ala y el color de los ojos. Registre sus observaciones en la tabla 9.4. (Se puede encontrar una versión descargable de la Tabla 9.4 en la pregunta "Laboratorio 9: Tabla" en el menú. Descargue el PDF, complete la tabla y cargue su tabla completa donde se indique).

    Reemplazar con ID de foto en stock libre de regalías: 157780298 Figura 9.5

    Las moscas de ébano tienen una única mutación genética en el alelo de SOLO UNO de los tres rasgos enumerados en la tabla 9.4. Compare la mosca de ébano que se muestra a continuación con la mosca de tipo salvaje en la figura 9.. ¿Qué diferencia notas? Pista: no los ojos. Los ojos todavía están rojos, solo rojo oscuro. Registre sus observaciones de la mosca del ébano en la tabla 9.4.

    Las moscas vestigiales también tienen una única mutación genética en el alelo para SOLO UNO de los tres rasgos enumerados en la tabla 9.4. Compare la mosca vestigial que se muestra a continuación con la mosca de tipo salvaje en 9.5. ¿Qué diferencia notas? Registre sus observaciones de la mosca del ébano en la tabla 9.4.

    Insertar ID de foto en stock libre de regalías: 1036057873 Figura 9.7

    Cruzas una mosca de tipo salvaje con una mosca de ébano. El 100% de la descendencia tiene el color del cuerpo bronceado de tipo salvaje. ¿Qué alelo es dominante, bronceado o ébano?

    Seleccione una respuesta y envíela. Para navegar con el teclado, use las teclas de flecha arriba / abajo para seleccionar una respuesta.

    C. Imposible de determinar

    Cruzas una mosca de tipo salvaje con una mosca de alas vestigial. El 100% de la descendencia tiene alas largas de tipo salvaje. ¿Qué alelo es dominante, largo o corto?


    Los microbiomas de las moscas de la fruta dan forma a su evolución

    Un ambicioso experimento al aire libre en moscas de la fruta en la Universidad de Pensilvania reveló que un microbioma alterado puede impulsar el cambio evolutivo. Crédito: Seth Rudman

    La expresión "eres lo que comes" ha adquirido un nuevo significado. En un experimento con moscas de la fruta, o Drosophila melanogaster, investigadores de la Universidad de Pensilvania descubrieron que la adición de diferentes especies de microbios a la comida de las moscas provocó que las poblaciones divergieran genéticamente, lo que provocó cambios genómicos significativos en solo cinco generaciones.

    "Nuestro trabajo es muy sugerente de que la composición de la comunidad microbiana impulsa, al menos en parte, cómo evolucionan los organismos en los que viven", dice Paul Schmidt, biólogo de Penn y autor principal del trabajo, que aparece en la revista. PNAS. "El hecho de que podamos ver este efecto en experimentos realizados en una escala de tiempo tan corta sugiere que la magnitud de los efectos de aptitud que tienen los microbios es increíble".

    A diferencia de un experimento de laboratorio, donde se controlan todos los aspectos posibles del entorno, desde la genética de las moscas hasta la temperatura y la dieta, para magnificar las diferencias entre los tratamientos, este conjunto de experimentos se llevó a cabo al aire libre, en Pennovation Works en el campus de Penn. El entorno refleja más de cerca la naturaleza, sujeto al clima, los cambios estacionales, incluso la extraña araña o mota de tierra que se entromete en los recintos.

    El hecho de que, a pesar de las posibles influencias de estos factores externos, los investigadores todavía encontraron que los cambios en el microbioma tienen un efecto significativo en los genomas de las poblaciones de moscas, hace que el hallazgo sea aún más convincente, dice Schmidt.

    "Creo que es justo decir que conservamos tanto realismo ecológico como pudimos a expensas de detectar grandes efectos", dice. "Simplemente cambiamos la abundancia relativa de estos microbios en la dieta de las moscas, y eso fue suficiente para ver un efecto".

    Schmidt y el becario postdoctoral Seth Rudman, el autor principal del artículo, aprovecharon el hecho de que las moscas tienen comunidades de microbiomas relativamente simples en comparación con otros organismos, como los humanos.

    "Si se hace un estudio del microbioma de un mamífero, se desconocen muchas de las bacterias que se encuentran en el intestino", dice Rudman. "Pero ese no es el caso de las moscas. Simplemente sucede que Drosophila tiene sólo unas 100 especies en su comunidad de microbioma".

    Otros beneficios de las moscas de la fruta para este tipo de estudio incluyen su corto tiempo de generación (se pueden estudiar varias generaciones en cuestión de meses) y el hecho de que pueden criarse hasta tamaños de población extremadamente altos. En este caso, eso significó cientos de miles de moscas en cada experimento.

    El experimento implicó criar varias generaciones de moscas de la fruta en una serie de recintos de malla, cada uno con un melocotonero y aproximadamente 100.000 moscas. Crédito: Seth Rudman

    A partir de trabajos anteriores, los científicos tenían la sospecha de que el microbioma estaba relacionado con cambios en la aptitud de la mosca. Las moscas de latitudes más al norte tienden a tener más bacterias Lactobacillus como parte de su microbioma, y ​​también viven más tiempo, tienen menos huevos y son más tolerantes al estrés. Las poblaciones más al sur, por otro lado, que tienden a tener más bacterias Acetobacter, tenían vidas más cortas, más huevos y eran menos tolerantes al estrés. El trabajo en el laboratorio mostró que exponer las moscas a estos dos tipos de bacterias provocaba estos mismos rasgos.

    Pero, ¿podrían los microbios impulsar la evolución de poblaciones enteras de moscas? Para probar eso, Schmidt, Rudman y sus colegas diseñaron una configuración experimental para manipular los microbiomas de las moscas. Introdujeron mil moscas en cada uno de varios recintos de malla al aire libre, de 2 metros cúbicos de tamaño y adornados con una cubierta vegetal y un melocotonero. Variaron la comida en algunos de los recintos, completándola con Acetobacter o Lactobacillus.

    Los investigadores confirmaron que la alimentación alteró los microbiomas de las moscas, aunque solo ligeramente. Sin embargo, eso fue suficiente para afectar sus genes. Al comparar los genomas de las moscas al comienzo del estudio con la conclusión, después de cinco generaciones, el equipo pudo detectar cambios distintos en la frecuencia de ciertos alelos, una variante de un gen, que eran consistentes con lo que se ha visto en la naturaleza. poblaciones de moscas.

    "Descubrimos que el alelo que era más común en las jaulas de solución de Lactobacillus era también el alelo que era más común en el norte, donde el propio Lactobacillus es más común", dice Rudman. "Y el alelo que fue más común en las jaulas de Acetobacter fue también el alelo que es más común en el sur, donde Acetobacter es más común".

    Para los investigadores, ese hallazgo recalcó la importancia de la influencia de los microbios.

    "La conclusión es que los microbios impulsan una rápida adaptación", dice Schmidt.

    Si ese efecto se traduce en humanos y otros animales es un tema de estudio adicional, dicen los autores, pero numerosos estudios han subrayado el potente efecto del microbioma.

    En el trabajo futuro, los investigadores cambiarán el guión, probando para ver si los cambios en los perfiles genéticos de las moscas influyen en qué microbios pueden afianzarse en sus microbiomas. Y también investigarán más profundamente para determinar con precisión cómo el microbioma cambiante afecta a su anfitrión.


    Ver el vídeo: Que están haciendo estas dos mujeres?. Mira todo bien para que no te solprenda (Diciembre 2022).